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APUNTES ENFERMEDADES INFECCIOSAS (POR ANTONIO EDUARDO ARIAS-WEB MÉDICA ARGENTINA-AÑO 2003) 1)
CLASIFICACIÓN DE LOS MICROORGANISMOS. 2) FARMACOS Y ENFERMEDADES INFECCIOSAS. 3)
EL LABORATORIO EN INFECCIOSAS. 4)
BIOSEGURIDAD. 1)
CLASIFICACIÓN DE LOS MICROORGANISMOS. BACTERIAS
VIRUS
HONGOS
2) FÁRMACOS Y ENFERMEDADES INFECCIOSAS A)ANTIBIÓTICOS Y QUIMIOTERÁPICOS
¿QUE PASA CON LA EMBARAZADA? En la Embarazada estan contraindicados los siguientes antibióticos: Quinolonas (artropatías en animales) , Tetraciclinas (descoloración y displasia de los dientes,inhibición del crecimiento de los huesos del feto,toxicidad hepática), Eritromicina estolato (aumenta el riesgo de hepatitis colestásica en la embarazada), Sulfamidas (contraindicadas durante el parto, hemólisis en los neonatos con carencia de glucosa 6 fosfato deshidrogenasa,teratógenas en algunos estudios en animales),Nitrofurantoína (contraindicada durante el parto,hemólisis en neonatos),Cloranfenicol (Hemólisis en presencia de déficit de glucosa 6-fosfato dehidrogenasa. Potencial síndrome de niño gris cuando se usa en el 3 trimestre o periparto-Contraindicado antes de las 12 semanas de gestación y después de las 28 semanas), Trimetoprim- Sulfametoxazol (Hemólisis en presencia de déficit de glucosa 6-fosfato dehidrogenasa. Teratogénico en animales con trimetoprim-contraindicado en el mismo período que cloranfenicol),Vancomicina (Probable toxicidad auditiva y renal),Rifampicina (Es teratogénico en algunas especies animales. Su efecto en el feto humano es desconocido),Isoniazida (Es mutagénico in vitro y embriotóxico en animales). Esta es una lista de los fármacos contraindicados en los que se conocen sus efectos,pero debe tenerse en cuenta que hay otros antibióticos de los cuales no se cuenta con información sobre la seguridad de su uso en la embarazada y por lo tanto siempre se debe tener presente que el uso de medicamentos durante la gestación siempre debe realizarse con mucha precaución, y no solamente con los antibióticos sino con cualquier fármaco que administremos. ¿CUÁL ES EL ESPECTRO QUE CUBREN LOS ANTIBIÓTICOS DE USO MÁS FRECUENTE? -LAS PENICILINAS G Y V: cubren principalmente cocos grampositivos. No actúa sobre estafilococo aureus porque estos son productores de penicilasas que producen la hidrólisis del fármaco. -METICILINA,CLOXACILINA,OXACILINA: son resistentes a penicilasas, son eficaces para estafilococo aureus y menos eficaces para otros cocos grampositivos que los anteriores. AMPICILINA,AMOXICILINA: a parte de cubrir grampositivos, también incluyen algunos gramnegativos como haemophilus influenzae,E. coli y Proteus mirabilis.(aunque estos gérmenes producen ßlactamasas que hidrolisan éstos fármacos). -CEFALOSPORINAS DE PRIMERA GENERACION (CEFAZOLINA,CEFALOTINA,CEFALEXINA): estreptococo,estafilococo.No enterococo y listeria. -CEFALOSPORINAS DE SEGUNDA GENERACION (CEFUROXIMA,CEFACLOR): escherichia coli,proteus,klebsiella,haemophilus influenzae,moraxella catarrhalis. No tan activos contra grampositivos como las de primera generación.( CEFOXITINA,CEFOTETAN): similar a cefuroxima pero más activo contra bacteroides fragilis. -CEFALOSPORINAS DE TERCERA GENERACION (CEFOTAXIMA,CEFTRIAXONA): enterobacterias,serratia,neisseria gonorreae,estreptococo pyogenes,estafilococo aureus,(CEFTAZIDIMA): similar a ceftriaxona pero más activo contra pseudomona aeruginosa. -CEFALOSPORINAS DE CUARTA GENERACION (CEFEPIME): similar a las de tercera generación pero más resistente a ßlactamasas. -MACROLIDOS: estreptococo pyogenes, neumococo,estafilococo aureus,corynebacterium difteriae,haemophilus influenzae,gonococo,bordetella pertussis,chlamydia trachomatis,micoplasma pneumoniae. Claritromicina es más potente contra cepas sensibles de estreptococos y estafilococos. Azitromicina es más activa contra haemophilus influenzae, moraxella catarrhalis,campylobacter,chlamydias, legionella pneumophila. -AMINOGLUCÓSIDOS: principalmente gramnegativos. -QUINOLONAS (NUEVAS QUINOLONAS): princialmente enterobacterias gramnegativas,gonococo,haemophilus influenzae,pseudomona aeruginosa,salmonellas sp,también bacterias ácido alcohol resistentes como el mycobacterium tuberculosis, mycobacterium leprae y kasassi. B) ANTIVIRALES CLASIFICACIÓN 1) LOS QUE IMPIDEN LA ENTRADA A LA CÉLULA -AMANTADINA---------------GRIPE -RIMANTADINA---------------GRIPE 2)LOS QUE ACTÚAN EN LA FASE DE REPLICACIÓN DEL GENOMA VÍRICO -ACICLOVIR-------------------HERPES SIMPLEX, VARICELA-ZOSTER -GANCICLOVIR---------------CMV -FOSCARNET------------------CMV-HERPES RESISTENTE A ACICLOVIR -RIBAVIRINA------------------VIRUS SINCITIAL RESPIRATORIO -TRIFLURIDINA---------------QUERATOCONJUNTIVITIS HERPETICA 3)LOS QUE ACTÚAN SOBRE LA TRANSCRIPTASA REVERSA -ZIDOVUDINA.-------------HIV/SIDA -ZALCITABINA-------------HIV/SIDA -ESTAVUDINA--------------HIV/SIDA -DIDANOSINA--------------HIV/SIDA 4)LOS QUE ACTÚAN SOBRE EL ENSAMBLAJE Y SALIDA -INTERFERÓN-------------HEPATITIS B Y C -INHIBIDORES DE LAS PROTEASAS---------HIV/SIDA C) ANTIFÚNGICOS CLASIFICACION 1) ANTIFÚNGICOS ANTIBIÓTICOS -POLIÉNICOS: ANFOTERICINA B( MICOSIS PROFUNDAS), NISTATINA (CANDIDIASIS) -NO POLIÉNICOS:GRISEOFULVINA (MICOSIS SUPERFICIALES) 2)IMIDAZOLES Y TRIAZOLES -KETOCONAZOL (PARACCCIDIOIDOMICOSIS,HISTOPLASMOSIS,COCCIDIOIDOMICOSIS NO GRAVES) -MICONAZOL (DERMATOFITOSIS) -FLUCONAZOL (CANDIDIASIS,CRIPTOCOCOSIS,ASPERGILOSIS,ETC) -ITRACONAZOL (IGUAL A KETOCONAZOL,ASPERGILOSIS,ESPOROTRICOSIS LINFOCUTANEA) -CLOTRIMAZOL (DERMATOFITOSIS) -ECONAZOL (TIÑAS,PITIRIASIS VERSICOLOR,CANDIDIASIS CUTANEAS SUPERFICIALES) 3) OTROS -FLUCITOSINA (CRIPTOCOCOSIS,ASPERGILOSIS,CANDIDIASIS,CROMOMICOSIS,ETC) -YODURO POTÁSICO (ESPOROTRICOSIS) -CLIOQUINOL (TIÑA PEDIS) 3) EL LABORATORIO EN INFECCIOSAS EL HEMOCULTIVO ( RECOMENDACIONES DE LA SOCIEDAD ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y MICROBIOLOGIA CLINICA) COMO SE OBTIENE LA MUESTRA -Retirar los tapones externos de los frascos. -Desinfectar los tapones de goma con alcohol iodado o con iodóforo, dejándolo secar al menos un minuto. -Localizar por palpación la vena que se va a puncionar. Debe utilizarse una vena distinta para cada extracción. -Desinfectar con alcohol una zona de piel de unos 10 cm de diámetro. Se comenzará por el centro y se irán haciendo círculos concéntricos hacia el exterior. - Repetir el paso anterior pero con el alcohol iodado, dejándolo secar durante un minuto. - Extraer la sangre sin tocar en ningún momento el campo desinfectado. Si fuera necesario palpar nuevamente la vena se utilizarán guantes de goma estériles o se desinfectarán los dedos de la misma manera que la piel del paciente. - Introducir la sangre en los frascos evitando que entre aire en el frasco para cultivo en anaerobiosis. La ventilación se realizará en el laboratorio de Microbiología. Mover los frascos para que la sangre y el medio de cultivo se mezclen. Introducir los frascos a 37ºC. VOLUMEN DE LA MUESTRA. -La cantidad de sangre a introducir en cada frasco viene determinada por el modelo utilizado en cada hospital, entre 15-20 ml por toma en adultos y 1-3 ml en niños. -Como norma general es adecuado que la sangre mantenga una proporción 1:10 con el medio de cultivo. Es decir, para un frasco de 100 ml, introducir 10 ml. de sangre. -En caso de neonatos y niños pequeños en que no se pueden obtener volúmenes grandes de sangre es suficiente una cantidad de 1-5 ml, que se introduce en un solo frasco. NÚMERO DE MUESTRAS. Tres hemocultivos por paciente, previos al tratamiento antimicrobiano. El intervalo entre las extracciones debe ser superior a una hora cuando sea posible, pero cuando exista una gran urgencia en iniciar el tratamiento, este intervalo puede acortarse hasta 15 minutos. En caso de sepsis y endocarditis subaguda las extracciones se reparten en 24 horas y en caso de que sean los hemocultivos negativos, obtener tres muestras más al día siguiente. TRANSPORTE. Deben enviarse al laboratorio. Hasta su envío mantener a 35-37ºC; cuando esto no sea posible, mantener a temperatura ambiente. Nunca debe refrigerarse ni congelarse. Cuando no haya venas accesibles puede realizarse la extracción de sangre arterial. No son adecuadas las muestras procedentes de catéter, solamente en caso de que se sospeche infección del propio catéter y se complica su retirada; se recomienda tomas del brazo opuesto y otras del brazo del catéter, para saber si es intra o extraluminal. EL UROCULTIVO ( RECOMENDACIONES DE LA SOCIEDAD ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y MICROBIOLOGIA CLINICA) COMO SE OBTIENE LA MUESTRA La muestra idónea es la primera micción de la mañana, ya que permite la multiplicación de bacterias durante la noche. Técnicas para mujeres. - La paciente debe quitarse la ropa interior. - Se lavará las manos cuidadosamente con agua y jabón, las enjuagará con agua y las secará con una toalla limpia. -Se separarán los labios mayores y menores, y los mantendrá separados en todo momento hasta que se haya recogido la orina. - Con una gasa enjabonada se lava bien la vulva pasándola de delante hacia atrás, se repetirá el proceso un total de 4 veces. - Enjuagar cuidadosamente con agua hervida para eliminar los restos de jabón. - Se indicará a la paciente que orine desechando los 20-25 primeros mililitros, tras lo cual y sin interrumpir la micción, se recogerá el resto de la orina en el recipiente. - El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con pierna, vulva o ropa del paciente. Los dedos no deben tocar el borde del frasco o su superficie interior. Técnica para hombres. - Lavado de las manos con agua y jabón. - Retraer completamente el prepucio, que se mantendrá así en todo momento, hasta que se haya recogido la orina. - Limpiar el glande con jabón neutro. - Eliminar los restos de jabón enjuagándolo con agua hervida. - Se pedirá al paciente que orine desechando los primeros 20-25 mililitros para, sin interrumpir la micción, recogerse el resto de la orina en el recipiente estéril. Técnica para niños. - En niños y niñas mayores la orina se recoge de forma similar a los adultos. - En niños y niñas más pequeños, la orina se recogerá en colectores o bolsas estériles especialmente diseñadas para ellos de la siguiente forma: * Lavado cuidadoso de los genitales y área perineal igual que en los adultos. * Colocar la bolsa de plástico o el colector. * Vigilar la bolsa cada 30 minutos y tan pronto como el niño haya orinado, deben retirarse y enviarse al laboratorio para su procesamiento. * Si la micción no se ha realizado en una hora, se repite la operación colocando una nueva bolsa. TRANSPORTE. La orina debe llegar al laboratorio en el plazo de una hora. Cuando esto no sea posible debe refrigerarse a 4ºC durante un tiempo máximo de 24 horas. El laboratorio debe controlar el transporte, garantizándose el que las muestras han sido refrigeradas desde el momento de su toma, siendo admisible, si no puede garantizarse el transporte correcto, la utilización de algún conservante (ácido bórico al 2% o el sistema comercial con bórico-formiato). VOLUMEN DE LA MUESTRA
- En pacientes ingresados con imposibilidad de recoger la muestra por sí mismos, se realizará sondaje vesical por personal sanitario experto con las medidas asépticas oportunas. - Para la investigación de anaerobios es necesario que la orina se obtenga por punción suprapúbica. - Para la búsqueda de micobacterias, la orina se recoge de la forma descrita anteriormente durante tres días consecutivos. En este caso el volumen de orina debe ser 100-150 ml. y se elegirá preferentemente la primera micción de la manana. Cuando se sospecha la presencia de hongos y virus, el volumen de orina será superior a 20 ml. y en el caso de parásitos se recogerá la orina de 24 horas. COPROCULTIVO ( RECOMENDACIONES DE LA SOCIEDAD ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y MICROBIOLOGIA CLINICA) COMO SE OBTIENE LA MUESTRA? Si son formadas o pastosas se toma una porción del recipiente donde hayan sido emitidas y se transfieren al sistema elegido para el envío al laboratorio. Se seleccionan zonas donde haya sangre, moco o pus. No son válidas las muestras contaminadas con orina. No debe utilizarse para la recogida papel higiénico, porque suelen tener sales de bario que inhiben algunas bacterias enteropatógenas. VOLUMEN MÍNIMO. Heces formadas o pastosas: al menos 1 ó 2 gr. para virología, añadir de 2 a 4 gr. más. Muestras del tamaño de una nuez son muy adecuadas pues permiten realizar la mayoría de las investigaciones posibles. Heces líquidas: entre 5 y 10 ml. TRANSPORTE. - Para el estudio bacteriológico es suficiente enviar la muestra en un recipiente estéril si se va a procesar en el plazo de 1 ó 2 horas después de su emisión. En caso contrario se remite en un sistema de transporte para bacterias. En ambos casos se mantiene en refrigeración hasta el procesamiento, para evitar el sobrecrecimiento de la flora normal que puede enmascarar o destruir a los enteropatógenos. El frío puede afectar la viabilidad de Shigella spp. Para el estudio de toxinas de C. difficile, la muestra se puede mantener hasta 48 horas en refrigeración, congelada a -20ºC se puede mantener indefinidamente. Este tipo de muestra, preferiblemente sin medio de transporte, es indispensable para el examen en fresco, el ensayo de las toxinas de C. difficile, detección por concentración de huevos o parásitos y estudios virológicos (cultivos, inmunoelectromicroscopía, ELISA, o látex para rotavirus). - Es preferible enviar las muestras para estudio virológico sin medio de cultivo, pues este diluye las partículas virales disminuyendo la sensibilidad. Si su envío se retrasa mucho es necesario utilizar un medio de transporte. Se enviarán en recipientes colocados en hielo. Para el estudio de parásitos es útil además, enviar una muestra pequeña en un medio fijador. Una parte en dos de fijador de alcohol polivinílico. - Las muestras para coprocultivo, deberán tomarse antes de la administración de antimicrobianos o agentes antidiarréicos. Es conveniente también evitar, sobre todo para estudios parasitológicos la utilización previa de antiácidos y laxantes oleoso, así como de los compuestos habitualmente utilizados para estudios radiológicos digestivos (bario, bismuto). - Indicar siempre el juicio díagnóstico de presunción y si el paciente es menor de un año. - Solicitar las investigaciones especiales explícitamente (C. difficile, C. perfringens, S. aureus, etc.). - Si con la primera muestra no se detecta la presencia de enteropatógenos, es necesario enviar en los días siguientes, dos tomas adicionales. En general, para los estudios parasitológicos, se deben enviar tres muestras tomadas en diferentes días. MUESTRAS INADECUADAS. - Muestras fecales. - Heces emitidas anteriores a dos horas y que no hayan sido refrigeradas. - Las tres tomas realizadas el mismo día. ESPUTO, ESPUTO INDUCIDO ( RECOMENDACIONES DE LA SOCIEDAD ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y MICROBIOLOGIA CLINICA) TÉCNICA O METODOLOGÍA DE LA OBTENCIÓN DEL PRODUCTO. - Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina. - Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal. - De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril (15 ml durante 10 minutos), siendo útil además realizar un drenaje postural o fisioterapia respiratoria. VOLUMEN MÍNIMO. De 2 a 10 ml, si es posible. TRANSPORTE Y CONSERVACION. Envío inmediato al laboratorio (no superior a 2 horas). Si no es posible, conservar en frigorifico 4ºC. - Es preferible realizar la toma antes de instaurar el tratamiento antibiótico. - No es útil para anaerobios. - No son inoculables las secreciones de sospechosa procedencia. - La expectoración debe rechazarse hasta obtener un esputo de calidad suficiente (mas de 25 leucocitos polimorfonucleares por campo 100x, y de 10 células epiteliales por campo 100x). LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO ( RECOMENDACIONES DE LA SOCIEDAD ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y MICROBIOLOGIA CLINICA) OBTENCIÓN DE LA MUESTRA. Se obtendrá antes de instaurar cualquier terapeutica antibiótica. 1.-LCR obtenido por punción lumbar: - Se localiza la zona elegida para la punción lumbar mediante palpación de los espacios intervertebrales una vez colocado el paciente en la posición adecuada. - Se desinfecta con alcohol al 70% una zona de uso 10 cm de diámetro en el área elegida, la aplicación del desinfectante se hace de forma concéntrica del centro a la periferia. Se repite la operación con povidona yodada que se deja secar durante un minuto. - Realizar la punción entre los espacios inter-vertebrales L3-L4, LA-L5 o L5-S1, siguiendo las normas de la más estricta asepsia. - Al llegar al espacio subaracnoideo retirar el estilete y dejar salir libremente el líquido cefalorraquídeo que se recogerá en tres tubos sin conservantes con tapón de rosca. Generalmente el primero para el estudio bioquímico, el segundo para el estudio microbiológico y el tercero para investigación de células (este suele ser el más transparente aunque la punción haya sido traumática). No obstante, el tubo más turbio se enviará a Microbiología. 2. LCR obtenido de reservorio Ommaya: - Hacer la toma de lugar de colección del reservorio previa desinfección. VOLUMEN MÍNIMO. - Para el estudio bacteriológico rutinario es suficiente 1 ml, aunque es preferible disponer de volúmenes superiores. - Para hongos o micobacterias se necesitan al menos 2 ml adicionales más por cada uno de los estudios, siendo deseable llegar a los 10 ml - Para estudio de virus se necesita al menos 1 ó 2 ml más. TRANSPORTE. El producto debe enviarse inmediatamente al laboratorio, pues alguno de los agentes etiológicos como S. pneumoniae, pueden lisarse rápidamente a partir de una hora tras su recogida. Si no es posible se mantendrá en estufa a 35-37ºC y una parte se incubará en un frasco de hemocultivo que se mantendrá en idénticas condiciones hasta su procesamiento en el laboratorio. Si no se dispone de estufas se mantendrá a temperatura ambiente. Nunca deberá refrigerarse pues se puede afectar la viabilidad de N. meningitidis y H. influenzae. En el LCR no se estudian rutinariamente anaerobios. En caso de solicitar una investigación se enviará en un medio de transporte de líquidos para estudio de anaerobios o en hemocultivo de anaerobios. Las muestras para el estudio de virus se enviarán en hielo, si el envío se retrasa más de 24 horas, se deberá de conservar a -70ºC. Como la meningitis suele surgir por un proceso bacteriémico se solicitarán simultáneamente hemocultivos, pudiendo ser así mismo estudiadas las posibles lesiones metastásicas cutáneas. Es necesario que el médico señale claramente las investigaciones solicitadas (bacterias habituales, micobacterias, anaerobios, hongos o virus). 4) BIOSEGURIDAD PRECAUCIONES UNIVERSALES PARA NO CONTAMINARSE -Todas las muestras de sangre, fluidos contaminados con sangre,semen,secreciones vaginales,líquido cefalorraquídeo,pleural,sinovial,amniótico,peritoneal y pericárdico y muestras de tejidos se deben considerar siempre potencialmente infectados. -Vacunación específica en el medio laboral como prevención de la hepatitis B. -Los cortes y heridas de los trabajadores se deben cubrir con apósitos impermeables. -Las lesiones cutáneas de las manos se cubrirán con guantes.Se retirarán anillos,joyas,etc. -Lavado de manos. -Uso de protectores de barrera:guantes,mascarillas,protectores oculares y batas. -Cuidado con los objetos cortantes. -Esterilización y desinfección correcta de instrumentos y superficies. -Las agujas no deben ser reencapuchadas, ni sometidas a ninguna manipulación. -Los trabajadores sanitarios que utilicen instrumentos cortantes o punzantes deben procurar deshacerse personalmente de los mismos, ya que el individuo que maneja un instrumento conoce mejor que nadie la situación en que lo ha utilizado y el posible riesgo. -Los objetos punzantes se colocarán en contenedores rígidos a prueba de perforaciones. -La adopción de estas precauciones elimina la necesidad de utilizar una señalización especial de las muestras,que podrían dar a los trabajadores una falsa sensación de seguridad. LAS INMUNIZACIONES EN EL PERSONAL DE SALUD -INFLUENZA: todos los empleados. -VARICELA: indicada en aquellos sin antecedentes o con serología negativa. -SARAMPIÓN: sin antecedentes o serología negativa. -RUBÉOLA: serología negativa. -PAROTIDITIS: sin antecedentes o serología negativa. -PNEUMOCOCO: empleados mayores de 65 años, cardiopatía, EPOC, diabetes,enfermedad renal,hepática,inmunodepresión. -TÉTANOS: empleados con esquemas incompletos. -HEPATITIS B: TODOS LOS EMPLEADOS. -HEPATITIS C: empleados que trabajan en áreas de alto riesgo (cocina,unidad de cuidados neonatales,etc.), serología negativa. ¿QUÉ PASA CON LOS CONTACTOS CON CASOS DE MENINGITIS BACTERIANA? -MENINGOCOCO: se realiza quimioprofilaxis a contactos domiciliarios o que convivieron con el caso índice de meningitis meningocóccica confirmada o sospechada, durante 4 horas o más, en los 4 días previos al diagnóstico y a los trabajadores de la salus (enfermeros, médicos)a parte de lo anterior también en el caso de que hayan realizado respiración boca a boca.No evita la enfermedad si ya esta en el período de incubación. Se realiza con Rifampicina VO 600 mg cada 12 horas, durante 2 días, esto es en adultos, en niños de 1 a 12 años 10 mg/kg/cada 12 horas durante 2 días y en menores de 1 año 5 mg/kg/cada 12 horas 2 días. También se puede usar ceftriaxona 125 mg IM en menores de 12 años y 250 mg en mayores, dosis única. -HAEMOPHILUS INFLUENZAE TIPO B: se realiza quimioprofilaxis a contactos domiciliarios o que convivieron con el caso índice de meningitis a haemophilus influenzae o aún no confirmada durante 4 horas o más, en los 4 días previos al diagnóstico.La quimioprofilaxis no es necesaria si todos los contactos menores de 4 años están completamente vacunados (incluyendo refuerzo a los 12 meses o más).En el personal de salud también rige lo anterior. Se realiza con Rifampicina pero a 600 mg/día durante 4 días en adultos y en niños 20 mg/kg/día también 4 días. -NEUMOCOCO: se realiza profilaxis a personas con asplenia anatómica y funcional independiente de su estado de inmunización. Se realiza con penicilina benzatínica cada 3 o 4 semanas.El tiempo dependera del caso. ¿QUÉ PASA CON EL VIRUS SINCITIAL RESPIRATORIO Y OTROS VIRUS EN PEDIATRÍA? Este virus el el principal causante de internaciones por infecciones respiratorias bajas en los niños, sus manifestaciones más frecuentes son la bronquiolitis y la neumonía. Primero se realiza aislamiento transitorio hasta confirmar la etiología viral o descartarla (sobre todo sincitial respitatorio y adenovirus).Luego el paciente ingresará de acuerdo a su etiología a una habitación junto a otros pacientes con igual etiología. Se deberán usar guantes desechables en la atención de cada paciente, el lavado de manos luego de revisar cada paciente es muy importante. El aislamiento respiratorio también se realizará en casos de sarampión y varicela donde el uso de mascarilla es obligatorio. PRECAUCIONES ENTÉRICAS Para prevenir la transmisión de infecciones a través de la vía fecal-oral.Las enfermedades en las que deben aplicarse precauciones entéricas son el cólera, diarreas por salmonellas, shigellas, escherichia coli, campylobacter, hepatitis A, rotavirus, giardiasis. MEDIDAS GENERALES -Uso de guantes para manipular objetos potencialmente contaminados con materia fecal. -Uso de delantal y máscaras ante posibles salpicaduras de material infectante. -Disponer de habitación o sector individual para aislamiento. -LAVADO DE MANOS antes de ingresar y salir del sector y después de sacarse los guantes. -Mantener la higiene del paciente. -No compartir objetos personales. -Decontaminar con hipoclorito de sodio (lavandina) en diluciones 1:10 a 1:50 los objetos en contacto directo antes de ser usados por otros pacientes, la ropa utilizada por el paciente, las heces y/o vómitos antes de su disposición final. -El personal y familiares no deben fumar,comer o beber en el sector o habitación del paciente. -Medidas de restricción en la entrada del sector. Colocación de signos de ALERTA BIBLIOGRAFÍA Y LECTURAS RECOMENDADAS -MICROBIOLOGÍA MÉDICA( JAWETZ,MELNICK,ADELBERG) 14 EDICIÓN 1992 -APUNTES DE LA CÁTEDRA DE FARMACOLOGÍA-UNIVERSIDAD NACIONAL DE TUCUMÁN SOBRE ANTIBIÓTICOS. -LAS BASES FARMACOLÓGICAS DE LA TERAPÉUTICA( GOODMAN & GILMAN) NOVENA EDICIÓN. -FARMACOLOGÍA VELAZQUEZ. -ADELANTOS EN ANTIVIRALES Y ANTIFUNGICOS: LOS CLÁSICOS,LOS NUEVOS Y LOS QUE VENDRÁN (FUNCEI-SIMPOSIO INTERNACIONAL INFECTOLOGÍA APLICADA EN EL CONO SUR 1999). -COMPENDIO DE TERAPÉUTICA ANTIMICROBIANA (THE MEDICAL LETTER ON DRUGS AND THERAPEUTICS-1997) -MATERIAL CURSO DE BIOSEGURIDAD-ASOCIACIÓN DE INFECTOLOGÍA Y MICROBIOLOGÍA CLÍNICA DE TUCUMÁN-1998 -ENFERMEDADES INFECCIOSAS EN PEDIATRÍA-BANFI,LEDERMANN,COFRÉ,COHEN-SEGUNDA EDICIÓN 1997 -PÁGINA INFECTO-NORMAS DE BIOSEGURIDAD DEL MINISTERIO DE SALUD PÚBLICA-URUGUAY www.infecto.edu.uy -PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA-SOCIEDAD ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y MICROBIOLOGÍA CLÍNICA. www.seimc.org
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